特定功能微生物多樣性分析,首發(fā)于微基生物。
]]>支配這些功能微生物發(fā)揮重要功能的基因被稱為功能基因,如amoA、dsrB、nxrA、nirK、mcrA、pmoA。目前微基生物已經(jīng)完成了幾十種功能基因的檢測,具有成熟的檢測技術(shù)和分析經(jīng)驗(yàn)。
氮循環(huán)
氮是生命體核酸與蛋白質(zhì)必不可少的組成元素。氮素的生物地球化學(xué)循環(huán)是土壤物質(zhì)循環(huán)的重要組成部分,不僅影響土壤質(zhì)量以及農(nóng)田等環(huán)境系統(tǒng)的生產(chǎn)力和可持續(xù)性,還會(huì)影響全球環(huán)境變化。氮循環(huán)是指氮?dú)?、無機(jī)氮化合物、有機(jī)氮化合物在自然界中相互轉(zhuǎn)化過程的總稱,包括氨化作用、硝化作用、反硝化作用、固氮作用等。在不同的過程中,不同的功能基因起著不同的左右,常見的氮循環(huán)功能基因如下表所示:
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基因名稱 |
編碼蛋白質(zhì) |
催化途徑 |
在氮循環(huán)中作用 |
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nifH |
固氮酶鐵蛋白 |
N2–>NH4+ |
固氮作用 |
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amoA |
氨單加氧酶 |
NH4+–> NO2– |
硝化作用 |
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nxrA |
亞硝酸鹽氧化酶 |
NO2––> NO3– |
硝化作用 |
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narG |
膜靠硝酸鹽還原酶 |
NO3––> NO2– |
反硝化作用 |
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napA |
可溶性細(xì)胞質(zhì)硝酸鹽還原酶 |
NO3––> NO2– |
反硝化作用 |
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nirK |
含銅離子的亞硝酸鹽還原酶 |
NO2––> NO– |
反硝化作用 |
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nirS |
含細(xì)胞色素cd1亞硝酸鹽還原酶 |
NO2––> NO– |
反硝化作用 |
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norB |
NO 還原酶 |
NO–> N2O |
反硝化作用 |
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nosZ |
N2O還原酶 |
N2O –> N2 |
反硝化作用 |
碳循環(huán)
結(jié)果展示
碳是生命物質(zhì)的主要元素之一,是有機(jī)質(zhì)的重要組成部分。碳元素在大氣、陸地、海洋等各大碳庫之間不斷循環(huán)變化。在大氣中,碳主要以CO2和CH4等氣體形式存在,在水中主要為碳酸根離子,在巖石圈中是碳酸鹽巖石和沉積物的主要成分,在陸地中則以各種有機(jī)物或無機(jī)物形式存在于植被和土壤中。碳循環(huán)中的主要功能基因如下表所示:
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微生物名稱 |
基因名稱 |
編碼蛋白質(zhì) |
催化途徑 |
在碳循環(huán)中的作用 |
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固碳微生物 |
cbbL |
固碳酶 RubisCO |
CO2àCH2O |
固碳作用 |
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cbbM |
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產(chǎn)甲烷菌 |
mcrA |
甲基輔酶M還原酶基因 |
CH2OàCH4 |
甲烷產(chǎn)生 |
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甲烷氧化菌 |
pmoA |
甲烷單加氧酶基因 |
CH4àCO2 |
甲烷氧化 |
硫循環(huán)
硫是自然界中最豐富的元素之一,它以不同形式存在,這些不同形式的硫在微生物作用下,可以相互轉(zhuǎn)化,構(gòu)成了硫的地球化學(xué)循環(huán)。
微生物在硫循環(huán)過程中的作用途徑主要有3條,1)是含硫有機(jī)物的脫硫作用,2)還原性無機(jī)硫的氧化作用力,3)硫酸鹽的還原作用。其中硫酸鹽還原菌(SRB)和硫氧化菌(SOB)是推動(dòng)硫循環(huán)的重用微生物。常見的硫循環(huán)相關(guān)的功能基因有:
土壤硫循環(huán)中主要功能基因列表
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微生物名稱 |
基因名稱 |
編碼蛋白質(zhì) |
催化途徑 |
在硫循環(huán)中的作用 |
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硫酸鹽還原菌 |
dsrA |
異化型亞硫酸鹽還原酶 |
硫酸鹽à硫化氫 |
還原作用 |
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硫酸鹽還原菌 |
dsrB |
異化型亞硫酸鹽還原酶 |
硫酸鹽à硫化氫 |
還原作用 |
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硫氧化菌 |
soxB |
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硫化物à硫酸 |
氧化作用 |
其他功能基因
功能微生物在自然界中積極的參與著地球化學(xué)循環(huán)。除了常見的碳循環(huán)、氮循環(huán)、硫循環(huán)功能微生物外,還有一些其他功能微生物起著重要的作用,比如參與磷循環(huán)微生物、厭氧氨氧化微生物等等。
微基生物積累了豐富的功能微生物檢測經(jīng)驗(yàn),如果你有其他的功能基因要檢測,可以把功能基因文獻(xiàn)或引物發(fā)給我們,我們進(jìn)行評(píng)估檢測。
檢測類型:
土壤、淤泥、水體等。
檢測方法:
二代高通量測序、實(shí)時(shí)熒光定量PCR。
樣本采集耗材:
為客戶提供樣本采集保存耗材,包括土壤樣本常溫保存液、取樣勺和保存管。
送樣要求:
土壤每樣本需1g,新鮮取樣,凍存于-80℃,保存期間切忌反復(fù)凍融,送樣時(shí)請(qǐng)使用干冰運(yùn)輸;
若采用常溫采集保存耗材,常溫寄送即可。
海水、湖水等水樣建議一個(gè)樣本取500-1000ml,過濾0.22um濾膜,把濾膜放入無菌管,-80℃保存,干冰寄送。
如果是污水等,建議一個(gè)樣本取50-100ml,將樣本放入無菌管中,-80℃保存,干冰寄送。
如一個(gè)樣本檢測多個(gè)功能基因,取樣量建議咨詢技術(shù)支持。
技術(shù)路線:
生物信息分析流程
客戶發(fā)表文獻(xiàn):
1:Hailu Wu, Xinze Wang, Xiaojuan He, et al. Effects of root exudates on denitrifier gene abundance, community structure and activity in a micro-polluted constructed wetland. Science of the Total Environment. 2017, 89:697-703.
2:Hailu Wu, Xinze Wang and XIaojun He. Effects of Selected Root Exudate Components on Nitrogen Removal and Development of Denitrifying Bacteria in Constructed Wetlands. Water. 2017, 9.
3: Congyan Wang, Jiawei Zhou, Jun Liu, et al. Responses of soil N-fixing bacteria communities to Amaranthus retroflexus invasion under different forms of N deposition. Agriculture, Ecosystems and Environment. 2017, 247: 329-336.
4:Congyan Wang, Kun Jiang, Jiawei Zhou, et al. Solidago canadensis invasion affects soil N-fixing bacterial communities in heterogeneous landscapes in urban ecosystems in East China. Science of The Total Environment. 2018,631: 702-713.
5:Cai Hui, Xiaoxiao Guo, Pengfei Sun, et al. Depth-specific distribution and diversity of nitrite-dependent anaerobic ammonium and methane-oxidizing bacteria in upland-cropping soil under different fertilizer treatments. Applied Soil Ecology. 2017, 113:117-126.
6:Xiaoming Lu, Pengzhen Lu and Ke Yang. Restoration using Azolla imbricata increases nitrogen functional bacterial groups and genes in soil. Applied Microbiology and Biotechnology. 2017,101: 3849-3859.
7: Sijie Wu, Ruili Li, Shuguang Xie, et al. Depth-related change of sulfate-reducing bacteria community in mangrove sediments: The influence of heavy metal contamination. Marine Pollution Bulletin.2019, 140:443-450.
8: Shuquan Peng, Fan Wang, Xibing Li, et al. A microbial method for improving salt swelling behavior of sulfate saline soil by an experimental study. Alexandria Engineering Journal. 2019, 58:1353-1366.
特定功能微生物多樣性分析,首發(fā)于微基生物。
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