生物信息分析之RDA分析_微基生物,首發(fā)于微基生物。
]]>做微生物多樣性研究時(shí),大家是不是經(jīng)常會遇到RDA分析、CCA分析、PCA分析、PCoA分析呀?我們知道它們對物種(基因或功能)的分析具有重要的作用。但是你知道它們代表什么意思?在什么情況下用什么分析嗎?
近期小編將把這一堆的分析給大家逐個(gè)講解,今天咱們首先從RDA分析入手!
?。ㄆ鋵?shí)上面所提到的分析,本質(zhì)上都屬于排序分析。排序就是在一個(gè)可視化的低維空間(通常是二維)重新排列這些樣方,使得樣方之間的距離最大程度地反映出平面散點(diǎn)圖內(nèi)樣方之間的關(guān)系信息。)
RDA分析其實(shí)是小名,它的中文名叫冗余分析,還有個(gè)洋氣的英文名叫Redundancy Analysis,RDA分析可以將樣本和環(huán)境因子反映在同一個(gè)二維排序圖上,從圖中可以直觀地看出樣本分布和環(huán)境因子間的關(guān)系。
比如下面這張由微基自己完成的圖
小編和大家一起來“破解”這張RDA圖
(1)在這個(gè)圖中,箭頭表示環(huán)境因子。
(2)箭頭連線的長度表示該環(huán)境因子與樣本分布間相關(guān)程度的大小,連線越長,相關(guān)性越大,反之越小。
(3)箭頭連線和排序軸的夾角以及箭頭連線之間的夾角表示相關(guān)性,銳角表示成正相關(guān)關(guān)系,鈍角則表示成反相關(guān)關(guān)系。夾角越小,相關(guān)性越高。
(4)箭頭所指方向表示群落分析指標(biāo)或環(huán)境因子的變化趨勢。
其實(shí)從RDA報(bào)告中,還可以看出所有環(huán)境因子或某個(gè)環(huán)境因子對樣本的影響,不過由于分析報(bào)告“太瑣碎”,通常在文獻(xiàn)中不會出現(xiàn),如下圖在這個(gè)報(bào)告中,紅色標(biāo)注內(nèi)表示所有環(huán)境因子對樣本變化的整體解釋量,綠色標(biāo)注內(nèi)則分別表示3個(gè)軸具體的解釋量。
那怎么看某個(gè)環(huán)境因子對所有樣本的影響呢?這里小編再給大家舉個(gè)例子
在圖3中,將變量射線延長,樣本垂直投影于射線上,沿著變量箭頭方向,環(huán)境變量值增大。圖中樣本Sa3和Sa4所對應(yīng)的環(huán)境變量A值近似相等,A對所有樣本影響的大小排序?yàn)椋篠a1>Sa4≈Sa3>Sa2>Sa5
看到這里是不是覺得RDA分析圖很強(qiáng)大?!想不想自己動手操作一下?!小編悄悄的告訴你RDA分析圖可以用許多軟件做,如CANNOCO、R語言的Vegan。
另外小編再告訴大家一個(gè)秘籍,在做RDA分析時(shí),環(huán)境因子的個(gè)數(shù)要小于物種的個(gè)數(shù),否則軟件會“罷工”!
(轉(zhuǎn)載請注明出處)
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生物信息分析之RDA分析_微基生物,首發(fā)于微基生物。
]]>PCR-DGGE(變性梯度凝膠電泳),首發(fā)于微基生物。
]]>DGGE作為一種成熟的分子生物學(xué)技術(shù)被廣泛應(yīng)用于環(huán)境科學(xué)(土壤、海洋、河流、冰川、淤泥等)、醫(yī)學(xué)(各種疾病治療前后,病變部位微生物的差異)、人體(鼻咽、口腔、黏膜、腸道)等領(lǐng)域進(jìn)行微生物多樣性分析。
實(shí)驗(yàn)流程圖:
實(shí)驗(yàn)結(jié)果
實(shí)驗(yàn)結(jié)果包括以下內(nèi)容
1 引物設(shè)計(jì)
以下是DGGE中常用的引物,我們將根據(jù)客戶的不同需求,進(jìn)行針對性的引物設(shè)計(jì)。
| ? | 引物 | 序列(5’-3’) |
| 細(xì)菌 16S V3區(qū)擴(kuò)增引物 |
357-F-GC | CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGG GCACGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG |
| 518r | ATTACCGCGGCTGCTGG |
| ? | 引物 | 序列(5’-3’) |
| 真核 18S V1-3區(qū)擴(kuò)增引物 |
Euk1A | CTGGTTGATCCTGCCAG |
| EukA516r-GC | CGCCCGGGGCGCGCCCCGGGCGGGGCGGGGGCA CGGGGGGACCAGACTTGCCCTCC |
2 基因組DNA抽提電泳檢測圖
針對客戶的樣本來源不同,我們針對性優(yōu)化不同的基因組抽提方法,已達(dá)到提取效果最佳。

說明:1-8為樣本所抽提基因組DNA,上樣量3uL;M為1kb Marker上數(shù)第一條帶為8 kb,中間的亮帶為3kb,濃度為30ng/uL,其余為10 ng/uL。

說明:1-8為樣本,負(fù)為負(fù)對照(說明我們的實(shí)驗(yàn)沒有污染,這對分子實(shí)驗(yàn)是至關(guān)重要的),上樣量為5uL;M為DL2000 Marker,上樣量3uL。其中亮帶為20ng/uL,其余為10 ng/uL。
Reconditioning PCR:
第一輪PCR產(chǎn)物將會作為新的模板再進(jìn)行少數(shù)循環(huán)的第二輪PCR擴(kuò)增,這叫做“Reconditioning PCR”。由于在“ Reconditioning PCR”的過程中引物和模板之間的比例始終保持在較高的水平上,因此可以保證引物與模板之間的退火要優(yōu)先于不同模板之間的退火,消除異源雙鏈(Heteroduplex)污染對于PCR-DGGE圖譜的觀察和分析。
參考文獻(xiàn):
(1)Heteroduplexes in mixed-template amplifications: formation, consequence and elimination by “reconditioning PCR”. 2002. Nucleic Acids Research.
(2)不同外源擾動因素對腸道菌群組成結(jié)構(gòu)影響的研究. 上海交通大學(xué) 2008 屆博士學(xué)位論文.
4 DGGE圖譜分析
4.1 DGGE膠圖和條形圖
?

4.2 戴斯相似性系數(shù)
4.3微生物多樣性指數(shù)
4.4 UPGAM法進(jìn)行樣品間的聚類分析圖

常見聚類分析方法有Neighbor Joining、single linkage、complete linkage、upgama、wpgama、centroid、median、ward’s
4.5微生物群落的多維定標(biāo)分析

4.6 主成分分析(PCA, Principal Component Analysis)

4.7 冗余分析(RDA, Redundancy Analysis)

6.1 二擴(kuò)電泳檢測
分別取5 μL PCR產(chǎn)物,于1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果如下圖所示

電泳檢測結(jié)果顯示:PCR產(chǎn)物條帶單一,片段大小正確,可進(jìn)行膠回收。
6.2 膠回收
采用AXYGEN 公司的 AxyPrepDNA 凝膠回收試劑盒回收 PCR 產(chǎn)物,取3 μL回收產(chǎn)物進(jìn)行電泳檢測。
6.3 TA連接及轉(zhuǎn)化
PCR產(chǎn)物的克隆使用 BioLinker的pED-T載體試劑盒。
6.4 陽性克隆的篩選及測序
在平板上隨機(jī)挑取8個(gè)克隆搖菌,菌液進(jìn)行M13檢測,挑取3個(gè)陽性克隆進(jìn)行測序。

7.1 fasta文件
全部測序結(jié)果進(jìn)行整理,去除載體序列,將其整理為fasta格式的序列文件,為后續(xù)分析做準(zhǔn)備。

7.2克隆子一致性分析(Alignment比對)
一般每個(gè)條帶送三個(gè)克隆子進(jìn)行測序,那么三個(gè)克隆子所測序列的一致性如何,我們通過clonemanager軟件進(jìn)行序列性的分析,如果克隆子的測序結(jié)果完全一致,那么會以綠色的覆蓋形式表示,若是序列不一致,會是白色區(qū)域。如下圖所示:
| 條帶編號 |
克隆子編號 |
菌株名稱 | GenBank序列號 | 最大相似度(%) | 條帶占比(%) |
| 1 | 3 | Winogradskyella ulvae strain KMM 6390 | NR_109172.1 | 91 | 67 |
| 7 | Polaribacter irgensii strain 23-P | NR_044733.1 | 99 | 33 | |
| 2 | 4 | Cyanothece sp. ATCC 51142 strain ATCC 51142 | NR_074316.1 | 93 | 33 |
| 5 | Clostridium populeti strain 743A | NR_026103.1 | 99 | 33 | |
| 7 | Candidatus Pelagibacter ubique HTCC1062 strain HTCC1062 | NR_074224.1 | 100 | 33 | |
| 3 | 3 | Paraprevotella clara YIT 11840 | NR_041626.1 | 100 | 67 |
| 8 | Flavobacterium limicola strain ST-82 | NR_024787.1 | 97 | 33 | |
| 4 | 1 | Bacteroides vulgatus ATCC 8482 strain ATCC 8482 | NR_074515.1 | 100 | 100 |
| 5 | 1 | Bacteroides fragilis YCH46 strain YCH46 | NR_074839.1 | 99 | 100 |
| 6 | 1 | Bacteroides gallinarum strain JCM 13658 | NR_041448.1 | 98 | 100 |
| 7 | 1 | Megamonas rupellensis strain FM1025 | NR_044473.1 | 97 | 100 |
7.4測序結(jié)果的系統(tǒng)發(fā)育樹分析

優(yōu)點(diǎn):1. 高效,理論上可以分離開一個(gè)堿基差異的DNA片段。
2. 方便,不用對樣品進(jìn)行標(biāo)記
3. 快速,對于已知DGGE條件的樣品,可在短時(shí)間能獲取DGGE圖譜
4. 直觀,DGGE圖譜可直觀的反應(yīng)出樣品中個(gè)組分的豐富度
5. 穩(wěn)定,DGGE作為一種成熟的技術(shù),可重復(fù)性高
6. 可多樣本同時(shí)分析,展現(xiàn)各樣本的差異
缺點(diǎn):1. 僅能檢測樣本中的主要微生物,占總量1%以上的微生物才能被檢測到。
2. DGGE只能對200-700bp的片段有效地分離,過大或者過小的片段分離效果都不是很好。
3. 因?yàn)閮x器數(shù)值有上限,對于某些某種主要菌株占比較大又要展現(xiàn)大部分條帶的樣品,通過DGGE圖譜不能很好的反映出各個(gè)菌株的豐富度。
4. 不同序列的DNA有可能發(fā)生共遷移而導(dǎo)致某些條帶會有多種不同的DNA片段
5. 因?yàn)槟承┪锓N的基因不同拷貝之間存在異質(zhì)性,即使一個(gè)堿基的差別都會使他們分開,而導(dǎo)致不同的條帶是相同物種。
6. DGGE技術(shù)對微生物的分類鑒定依賴于基因數(shù)據(jù)庫,若數(shù)據(jù)庫中基因序列信息不夠豐富,將會限制DGGE的使用。
7. 由于某些種類的16S rDNA不同拷貝之間的多態(tài)性問題,可能導(dǎo)致自然群落中細(xì)菌數(shù)量的過多估計(jì)。
送樣要求
1 、環(huán)境樣品基因組DNA
1) 請?zhí)峁舛却笥?0ng/uL,總量大于500ng的基因組DNA,DNA純度較差或降解嚴(yán)重會影響后繼的擴(kuò)增實(shí)驗(yàn)。如果方便的話,可提供電子版DNA電泳檢測照片及OD260/280比值。
2) 樣品在保存期間避免反復(fù)凍融。
3) 送樣務(wù)必標(biāo)清楚樣品編號,并用parafilm膜對管口進(jìn)行密封。
4)請務(wù)必填寫完整的送樣訂單,并用自封袋密封后同樣品一起送樣,以便收到樣品后妥善保存。
2、 環(huán)境樣品
1)送樣樣品盡量保證新鮮,為了防止微生物死亡或DNA降解,采樣后建議立即冰凍保存,如樣本極為珍貴,建議采用液氮速凍后-80℃冰箱保存。
2)樣品在保存期間避免反復(fù)凍融。
3)若是樣品中含有大量的腐殖質(zhì)酸、重金屬等PCR反應(yīng)抑制劑,請?jiān)谒蜆訒r(shí)注明。
4)請務(wù)必填寫完整的送樣訂單,并用自封袋密封后同樣品一起送樣,以便收到樣品后妥善保存。
送樣條件:
以上兩種類型的樣本,送樣時(shí)采用干冰保存運(yùn)輸;若是距離較遠(yuǎn),建議采用干冰加冰袋,存放于冰盒中。
3、各類未抽提基因組樣品的送樣量:
土壤:3-5 g(干沙土、干粘土、農(nóng)田土、堆肥、底泥、泥炭土、淤泥等)
糞便:3-5 g
腸道內(nèi)容物:3-5 g
動物組織:3-5g(鰓、胃粘膜、腸粘膜、口腔黏膜等)
分泌物:2-3 mL(唾液、鼻涕、汗液、淚水等)
水樣:2L以上水過濾后的濾膜,若環(huán)境中微生物豐富,可適當(dāng)減少水的體積。
植物內(nèi)生菌:10-20g葉片;3-5g根系。
血液:10mL。
葉片:50-100g
其他來源的樣品請垂詢:400-660-9270或郵件:support@tinygene.com,我們會在第一時(shí)間回復(fù)您!
以上用PP材料的epp管或螺口管盛裝即可。
PCR-DGGE(變性梯度凝膠電泳),首發(fā)于微基生物。
]]>RDA分析(Redundancy analysis),首發(fā)于微基生物。
]]>RDA分析,即冗余分析,對比主成分分析可以發(fā)現(xiàn),其實(shí)冗余分析就是約束化的主成分分析。PCA和RDA的目的都是尋找新的變量來代替原來變量,它們主要區(qū)別在于后者樣方在排序圖中的坐標(biāo)是環(huán)境因子的線性組合。它的優(yōu)點(diǎn)就是考慮了環(huán)境因子對樣方的影響,因?yàn)橛行r(shí)候我們想得到在某些特定條件限制下(如海拔高度,PH值,酸堿度,疾病組與健康組等)物種的分布??梢缘玫侥男┪锓N受特定的環(huán)境因子影響??梢缘玫饺缒承┲脖皇鞘芎0胃叨扔绊懀承┚躊H值或酸堿度的影響等。
對數(shù)據(jù)的準(zhǔn)備,需要兩個(gè)矩陣,一個(gè)數(shù)據(jù)矩陣,一個(gè)環(huán)境矩陣,數(shù)據(jù)矩陣和pca準(zhǔn)備數(shù)據(jù)相同,環(huán)境矩陣形式如下,如果有不能量化的環(huán)境因子(如性別,疾病與健康等)聯(lián)系我們,來量化您的數(shù)據(jù)。
對數(shù)據(jù)的要求,樣方的個(gè)數(shù)必須大于環(huán)境因子的個(gè)數(shù)。
| 環(huán)境因子1 | 環(huán)境因子2 | |
| 樣方1 | ||
| 樣方2 |
RDA分析(Redundancy analysis),首發(fā)于微基生物。
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